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單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序

單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序


single cell sequencing
單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序(scRNA-seq),是指在單細(xì)胞水平上對(duì) RNA 進(jìn)行高通量測序和分析的新技術(shù),具有通量高、成本低的顯著優(yōu)勢。
服務(wù)類別:測序/合成總訪問:400
最后更新:2025-7-1半年訪問:179
參考報(bào)價(jià):電議:18616173421
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  • 公司簡介

單細(xì)胞測序技術(shù)在2013年被 Nature Methods 評(píng)為年度技術(shù),被Science評(píng)為年度六大生物類科研熱點(diǎn)的首位,又在2015年登上Science轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)封面。 Nature Methods 將2019年年度技術(shù)又給了單細(xì)胞多組學(xué)。2013年以來基于單細(xì)胞測序技術(shù)獲得了多方面的研究進(jìn)展,文獻(xiàn)發(fā)表也呈現(xiàn)迅猛增長趨勢。即使來源相同的單個(gè)細(xì)胞,由于隨機(jī)生物過程和環(huán)境擾動(dòng)的原因,彼此在許多方面也存在差異,即異質(zhì)性。尤其是腫瘤細(xì)胞、免疫細(xì)胞、胚胎發(fā)育期細(xì)胞、干細(xì)胞等最為突出。常規(guī)的組學(xué)技術(shù)發(fā)現(xiàn)不了這一現(xiàn)象帶來的影響,由此研究人員開啟了單細(xì)胞測序技術(shù)的探索之路。

Pubmed收錄“single-cell sequencing”文獻(xiàn)統(tǒng)計(jì)


技術(shù)原理:

       單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序利用GemCode™技術(shù)的微流控技術(shù)進(jìn)行單個(gè)細(xì)胞分選,將帶有條形碼和引物的凝膠珠和單個(gè)細(xì)胞包裹在油滴中;在每個(gè)油滴內(nèi),凝膠珠溶解,細(xì)胞裂解釋放mRNA,通過逆轉(zhuǎn)錄把凝膠珠的特異性barcode引入到cDNA并用于區(qū)分細(xì)胞;液體油層破壞后,cDNA后續(xù)進(jìn)行文庫構(gòu)建,結(jié)合illumina測序平臺(tái)對(duì)文庫進(jìn)行測序檢測,即可一次性獲得大量單細(xì)胞的基因表達(dá)數(shù)據(jù),從而達(dá)到在單細(xì)胞水平進(jìn)行表達(dá)測序的目的。10x GenomicsᅠChromium Single Cell單細(xì)胞測序技術(shù)的發(fā)展,極大地促進(jìn)了單細(xì)胞組學(xué)研究。


實(shí)驗(yàn)流程:


技術(shù)特點(diǎn):
● 真正意義上的單細(xì)胞檢測(每一個(gè)細(xì)胞形成單獨(dú)的GEM,分別進(jìn)行細(xì)胞標(biāo)記);
● 超低的單個(gè)細(xì)胞價(jià)格;
● 多細(xì)胞捕獲率低;
● 超高的捕獲效率(單個(gè)細(xì)胞捕獲效率高達(dá)65%);
● 全自動(dòng)真正單細(xì)胞分離、實(shí)驗(yàn)周期短;
● 超高的細(xì)胞通量(每個(gè)樣本最多可測10000個(gè)細(xì)胞,HT每個(gè)樣本可檢測高達(dá)20000個(gè)細(xì)胞);
● 細(xì)胞類型多樣化(適宜40μm直徑以內(nèi),無下限);
● 通量高(可同時(shí)進(jìn)行8通道檢測,HT可同時(shí)進(jìn)行16通道檢測)。

產(chǎn)品分類:

● 單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組
   單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測序能夠?qū)Ξ愘|(zhì)群體中的細(xì)胞亞群進(jìn)行全面的研究,追蹤單個(gè)細(xì)胞的表達(dá)譜,鑒定稀有細(xì)胞類型,有效地解決組織樣本無法破解的細(xì)胞異質(zhì)性難題。
● 單細(xì)胞基因表達(dá)Flex
   單細(xì)胞基因表達(dá)Flex以非常高的靈活性帶來了超高靈敏度的全轉(zhuǎn)錄組分析,樣本在固定的同時(shí)鎖定生物學(xué)狀態(tài),這樣可以保存脆弱樣本,并且樣本可以大規(guī)模、長時(shí)間、穩(wěn)定的運(yùn)輸。此產(chǎn)品有獨(dú)特的探針設(shè)計(jì),探針雜交的同時(shí)可以進(jìn)行樣本標(biāo)記,實(shí)現(xiàn)多樣本的混樣,在一定程度上降低了成本。樣本在固定后可進(jìn)行長期儲(chǔ)存。在樣本類型上,此產(chǎn)品可兼容FFPE樣本。
● 單細(xì)胞免疫組庫
   單細(xì)胞免疫組庫測序解決了TCR/BCR雙鏈匹配的問題,可以在單細(xì)胞水平完美匹配TCR/BCR雙鏈。
● 單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組、免疫組庫+表面蛋白
   單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組或免疫組庫能夠?qū)?xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)錄組及免疫組庫進(jìn)行分析,巧妙利用 Feature Barcode技術(shù)及Biolegend配套抗體,同時(shí)檢測表面蛋白表達(dá)變化。
● 單細(xì)胞ATAC-seq
   在單細(xì)胞層面利用改造后活性極高的轉(zhuǎn)座酶切割開放染色質(zhì)區(qū)域,對(duì)此區(qū)域進(jìn)行測序,是轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制研究領(lǐng)域的一種高效、簡便的方法。
● 單細(xì)胞ATAC+轉(zhuǎn)錄組測序
   整合單細(xì)胞ATAC測序和轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù),可以同時(shí)在一個(gè)細(xì)胞內(nèi)研究基因表達(dá)和染色質(zhì)開放性。

樣品要求:
● 細(xì)胞總量:細(xì)胞總數(shù)大于5×105個(gè)
● 樣品濃度:7×105-1.2×106cells/mL
● 細(xì)胞活率:大于80%
● 細(xì)胞成團(tuán)率:小于5%
● 細(xì)胞大。盒∮40μm
● 細(xì)胞培養(yǎng)基及緩沖液不能含有Ca2+和Mg2+等影響酶活性的物質(zhì)
● 組織需解離成單細(xì)胞懸液,植物細(xì)胞需制成原生質(zhì)體

應(yīng)用領(lǐng)域:


數(shù)據(jù)結(jié)果展示:


 

應(yīng)用案例(一)

CD36+癌相關(guān)成纖維細(xì)胞通過分泌巨噬細(xì)胞遷移抑制因子為肝細(xì)胞癌提供免疫抑制微環(huán)境
影響因子:38.079
發(fā)表時(shí)間:2023.03
發(fā)表期刊:Cell Discovery
原文:CD36+ cancer-associated fibroblasts provide immunosuppressive microenvironment for hepatocellularcarcinoma via secretion of macrophage migration inhibitory factor

 


       肝細(xì)胞癌(HCC)是一種具有高度細(xì)胞異質(zhì)性的免疫治療耐藥惡性腫瘤。細(xì)胞類型的多樣性以及腫瘤細(xì)胞與非腫瘤細(xì)胞之間的相互作用仍有待闡明。人類和小鼠HCC腫瘤的單細(xì)胞RNA測序顯示癌癥相關(guān)成纖維細(xì)胞(CAF)的異質(zhì)性?缥锓N分析發(fā)現(xiàn)CD36+ᅠCAFs表現(xiàn)出高水平的脂質(zhì)代謝和巨噬細(xì)胞遷移抑制因子(MIF)表達(dá)。此外,CD36在CD36+ᅠCAFs中通過脂質(zhì)過氧化/p38/CEBPs軸介導(dǎo)氧化性LDL攝取依賴的MIF表達(dá),CD36+ᅠCAFs以MIF和CD74依賴的方式招募CD33+ᅠ髓源性抑制細(xì)胞(MDSCs)。CD36+ᅠCAFs與HCC細(xì)胞共植入促進(jìn)HCC在體內(nèi)的進(jìn)展。最后,CD36抑制劑與抗PD-1免疫治療協(xié)同作用,通過恢復(fù)HCC中的抗腫瘤T細(xì)胞反應(yīng)。研究者的工作強(qiáng)調(diào)了闡明特定CAF亞群功能在理解腫瘤微環(huán)境和免疫系統(tǒng)之間相互作用的重要性。
 


應(yīng)用案例(二)
單細(xì)胞免疫組庫測序揭示新冠感染和接種疫苗后BCR的變化
影響因子:19.568
發(fā)表時(shí)間:2022.12
發(fā)表期刊:Emerging Microbes & Infections
原文:Comparative global B cell receptor repertoire difference induced by SARS-CoV-2 infection

       為了研究SARS-CoV-2感染和接種滅活疫苗的健康/感染康復(fù)者之間BCR的動(dòng)態(tài)差異,研究者對(duì)接種過3針滅活疫苗的健康人、接種滅活疫苗的康復(fù)患者、未接種過疫苗的康復(fù)患者進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組+BCR測序,然后與4名感染患者的B細(xì)胞公開數(shù)據(jù)進(jìn)行整合分析,發(fā)現(xiàn)BCR的V基因使用率在感染組(無論是否已康復(fù))比疫苗接種組更顯著。感染后VH基因擴(kuò)增最多的是IGHV3-33,而接種組中擴(kuò)增最多的是IGHV3-23。感染組的BCR克隆性擴(kuò)增和體細(xì)胞超突變均高于健康接種組,感染患者、接種疫苗的健康人和康復(fù)人群共享一小部分公共克隆型。此外,還鑒定了幾種針對(duì)SARS-CoV-2刺突蛋白的公共抗體。這些結(jié)果全面表征了從 SARS-CoV-2 感染到疫苗接種的BCR重鏈和輕鏈配對(duì)庫,為下一代精準(zhǔn)疫苗的開發(fā)提供了進(jìn)一步的指導(dǎo)。
研究背景:
       
在SARS-CoV-2感染或疫苗接種后,B細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生抗體,在獲得性免疫中起重要作用。在前人研究中,新冠感染或疫苗接種后V基因及免疫球蛋白特征已進(jìn)行過很多研究,但輕重鏈的配對(duì)關(guān)系缺失。因此,本文利用單細(xì)胞免疫組庫測序方法對(duì)不同人群進(jìn)行分析,從單細(xì)胞水平確認(rèn)BCR的特征。
樣品分組:
       1.接種過3針滅活疫苗(BBIBP-CorV)的健康人6例(接種前后均進(jìn)行檢測);
       2.接種過1針BBIBP-CorV的康復(fù)患者5例;
       3.未接種過BBIBP-CorV的康復(fù)患者5例;
       4.SARS-CoV-2感染患者4例。
 

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