如下圖為:細(xì)胞鋪板時,常出現(xiàn)的細(xì)胞分布不均勻現(xiàn)象。
細(xì)胞居中和細(xì)胞邊緣化
首先,了解一下細(xì)胞鋪板的必要性!
從經(jīng)濟(jì)和高效的角度來說,需要根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇不同規(guī)格的培養(yǎng)板。如在進(jìn)行藥物對待測細(xì)胞半抑制率(IC50)測試時,通常使用96孔板,一方面可以設(shè)置濃度梯度;另外還可一次性測多個藥物,減少實(shí)驗(yàn)誤差。
如下表格:
常見的幾種培養(yǎng)板規(guī)格及其應(yīng)用
細(xì)胞鋪板主要分為3大步驟:收集細(xì)胞→細(xì)胞計(jì)數(shù)→細(xì)胞鋪板
一、收集細(xì)胞
即把培養(yǎng)皿/瓶的細(xì)胞消化收集,與傳代一樣,不再贅述。
二、細(xì)胞計(jì)數(shù)
一般傳代的細(xì)胞密度較大,在鋪板時最好控制細(xì)胞數(shù)量。一般采用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),對于體積較大的細(xì)胞如腫瘤細(xì)胞采用下圖藍(lán)色部分的白細(xì)胞計(jì)數(shù)區(qū)域,即利用四個角的四個大方格。
血球計(jì)數(shù)板模式圖(圖片來自百度)
計(jì)算原理:由于每個大方格子(紅框),邊長為1mm,蓋上蓋玻片后的高度為0.1mm,因此計(jì)數(shù)室內(nèi)加滿細(xì)胞懸液的體積為0.1mm3=10-4cm3=10-4ml。
細(xì)胞數(shù)量 = 4個大格子的平均數(shù)*稀釋倍數(shù)*104個/mL
常見問題解答:
Q:細(xì)胞計(jì)數(shù)前后出現(xiàn)較大誤差?
考慮細(xì)胞沉降導(dǎo)致懸液不勻;懸液體積過大或過;稀釋倍數(shù)太高或太低等原因造成。
Q:如何克服細(xì)胞懸液不均勻的問題?
盡量將細(xì)胞吹打?yàn)閱蝹,防止抱團(tuán),且用移液槍充分吹打,使其均勻懸浮在培養(yǎng)基中。
Q: 一般加多少細(xì)胞懸液合適?
由于加入計(jì)數(shù)室的量,過少會導(dǎo)致計(jì)數(shù)室內(nèi)出現(xiàn)氣泡,過多則會使得計(jì)數(shù)板上的蓋玻片不緊貼計(jì)數(shù)板,使得高度變高,體積變大;計(jì)數(shù)室體積為9mm3,所以一般加15ul左右。
Q: 計(jì)數(shù)時,細(xì)胞稀釋倍數(shù)如何控制?
若是計(jì)數(shù)室細(xì)胞過稀或過密,會造成較大誤差,一般最適濃度為5~10×105細(xì)胞/ml。如一般10cm皿的細(xì)胞約300-500萬個,一些細(xì)胞個體小也能達(dá)到1000-2000萬,可根據(jù)所需細(xì)胞數(shù)目取出部分作稀釋或連續(xù)稀釋后計(jì)數(shù)。舉例來說可將100ul細(xì)胞懸液加入到900ul培養(yǎng)基中,混勻后進(jìn)行計(jì)數(shù),計(jì)數(shù)所得乘以10即為實(shí)際細(xì)胞密度。
Q: 計(jì)數(shù)的原則有哪些?
計(jì)數(shù)時對壓在最外圈邊線的細(xì)胞遵循“計(jì)上不計(jì)下,計(jì)左不計(jì)右”的統(tǒng)計(jì)學(xué)原則,遇到兩個以上的細(xì)胞組成的細(xì)胞團(tuán)計(jì)為一個細(xì)胞。
三、細(xì)胞接種
根據(jù)操作手法,一般分為2類:
第一類:6孔板、12孔板和24孔板
各種培養(yǎng)板規(guī)格(來自Thermo Fisher)
操作步驟:
① 稀釋細(xì)胞:根據(jù)上述計(jì)數(shù)結(jié)果后,將細(xì)胞稀釋到目的濃度;
② 加入細(xì)胞懸液:充分混勻后,貼壁加入細(xì)胞懸液;
③ 搖勻:這一步很重要!接種結(jié)束后,將板在超凈臺上十字形搖勻,最后于顯微鏡下觀察。
注意事項(xiàng):
鋪板后,不可以轉(zhuǎn)圈搖,因?yàn)榧?xì)胞會被帶到中間;
如果培養(yǎng)液量少,由于瓶體內(nèi)液體有向邊緣吸的特性,所以造成中間低洼,細(xì)胞容易聚集?梢远嗉狱c(diǎn)液體緩解,若6孔板一般加2ml,我們可以加到2.5ml。
第二類:96孔板/384孔板
96孔板/384孔鋪板時步驟與上述基本一致,只是多使用排槍,即不用搖勻。
96孔板/384孔板(來自Thermo Fisher)
注意事項(xiàng):
用排槍吸取時,一定要保證每個槍頭吸上來的懸液體積一致;
鋪96孔板時,如果是用于進(jìn)行MTS等長時間測試時,最外圈應(yīng)空余出來,不接細(xì)胞,加入一圈PBS或多于細(xì)胞懸液,以防止培養(yǎng)基蒸發(fā)引起的邊緣效應(yīng);
96孔板或384孔板鋪好細(xì)胞后最好不再搖晃,小心地放入培養(yǎng)箱即可。
常見問題解答:
Q: 如何避免每個孔之間的細(xì)胞不均勻?
鋪板速度盡量快點(diǎn),在加完半邊板后,需要再次將培養(yǎng)皿內(nèi)剩余的細(xì)胞懸液充分混勻再繼續(xù)鋪板。
Q:十字形搖勻具體是怎么搖?
放在水平板面上先上下移動,再左右移動,每個方向5到6次。
Q:對于某些容易聚團(tuán)的細(xì)胞,該怎么辦?
對于容易聚團(tuán)的細(xì)胞,盡管當(dāng)時搖勻了,但是靜置30min后,取出后將細(xì)胞培養(yǎng)板后,肉眼即可見嚴(yán)重的細(xì)胞居中抱團(tuán)現(xiàn)象,比如乳腺癌細(xì)胞MDA-MB-231。對于這種細(xì)胞解決辦法:從個人經(jīng)驗(yàn)來看,若是時間允許的話,可以降低接種密度,可以隔一天細(xì)胞多了再進(jìn)行藥物處理或者劃線等。
Q:為啥要貼側(cè)壁加入細(xì)胞懸浮液?
一般從孔的左邊靠近底部貼壁加入,不要從中間加入;因?yàn)榻臃N之前已將細(xì)胞懸液做過充分混勻,直接從側(cè)壁加入能盡量保持細(xì)胞懸液的均勻狀態(tài);另外貼側(cè)壁加入也能減少孔內(nèi)氣泡的產(chǎn)生。
Q:如何把握細(xì)胞密度?
細(xì)胞密度對于鋪板很重要,過密很容易造成細(xì)胞居中,過稀會造成細(xì)胞難以生長起來。一般進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),我們通常會設(shè)計(jì)一組不同細(xì)胞密度對報告基因度值影響的預(yù)實(shí)驗(yàn),從而根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果來確定細(xì)胞的具體接種數(shù)量。
Q: 有些貼壁不牢的細(xì)胞在細(xì)胞培養(yǎng)板中收取上清或移除上清時應(yīng)注意什么?
有些細(xì)胞如293T細(xì)胞貼壁不牢,如果需要在96孔板中進(jìn)行實(shí)驗(yàn)時,如果需要吸除上清,應(yīng)避免直接使用吸泵等吸力過大的設(shè)備,另外可以在收板時使用培養(yǎng)板專用離心機(jī)離心后在取出上清。另外也可以在接板前使用千分之一的明膠提前加入培養(yǎng)板中,在培養(yǎng)箱孵育30分鐘以上后再將細(xì)胞接入。
細(xì)胞鋪板是個熟能生巧的實(shí)驗(yàn),本期我們是根據(jù)多年實(shí)戰(zhàn)經(jīng)驗(yàn)介紹的技巧,供大家參考,但鑒于每個人手法不同,培養(yǎng)的細(xì)胞特性也因人而異,因此,還需要實(shí)踐中多多練習(xí),了解你手中細(xì)胞的特性,進(jìn)而擁有一套屬于你的操作手法。如果你的實(shí)驗(yàn)中有更好的方法,也歡迎大家積極討論,互相學(xué)習(xí)!