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雙色同步成像在熒光共定位等成像實(shí)驗(yàn)中的應(yīng)用

瀏覽次數(shù):5750 發(fā)布日期:2015-7-17  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
熒光的共定位是當(dāng)今生物顯微成像中一個(gè)極為常見的技術(shù),兩個(gè)或者更多種不同顏色的熒光探針被用來標(biāo)記不同的結(jié)構(gòu)/位點(diǎn),使得其相互關(guān)系得以明晰地在合并的圖像上展現(xiàn)。隨著研究者對于實(shí)驗(yàn)的要求越來越高,這些熒光共定位的成像逐漸被希望能用于熒光強(qiáng)度高速變化或者樣品本身位置不斷變化的實(shí)驗(yàn)中,比如活動的斑馬魚、線蟲體內(nèi)兩類神經(jīng)細(xì)胞的熒光共定位成像。在這些實(shí)驗(yàn)中,由于樣品本身是運(yùn)動的,兩個(gè)顏色的成像時(shí)間間隔越短,越能夠反映熒光探針共定位的真實(shí)情況。
 
在另外一些實(shí)驗(yàn)中,同一個(gè)熒光探針的熒光顏色(波長)會隨著環(huán)境的變化而發(fā)生變化,那么前后兩種顏色熒光強(qiáng)度的比值就能反映出環(huán)境的變化,如Di4之于細(xì)胞膜電位,Cameleon之于Ca離子濃度等等。當(dāng)相關(guān)的環(huán)境變化速度比較快的時(shí)候,兩個(gè)顏色的成像時(shí)間間隔越短,測量也就越精確。

綜合以上兩類成像實(shí)驗(yàn),均是需要盡可能地將兩個(gè)不同顏色熒光信號在同一時(shí)刻拍攝下來,那么最理想的情況就是我們在這篇Application notes中所提到的雙色同步成像,即完全同時(shí)地拍攝兩個(gè)顏色通道的熒光信號。
 
雙色同步成像——采用W-View GEMINI的完全同步成像
 
雙色同步成像最直接的思路就是用彩色相機(jī),但如今絕大多數(shù)的彩色相機(jī)是在黑白芯片的基礎(chǔ)上將每個(gè)像素前添加濾光涂層(一般為紅、綠、藍(lán)三種,如下圖),此彩色濾光涂層使得不同的像素可以分別得到不同的顏色信息,最后合成出彩色的圖片。這樣的設(shè)計(jì)在明場成像(如HE染色,免疫組化切片)中不可或缺,但對于生物熒光信號的成像卻是有缺陷的。首先,濾光涂層的出現(xiàn)會吸收或反射部分入射光信號,降低整個(gè)芯片的靈敏度,在信號本來就較弱的熒光拍攝中會影響到成像信噪比;其次,由于不同像素前存在不同顏色的濾光涂層,對于單色光信號——比如熒光信號——的實(shí)際分辨率將被降低。換句話說,對于一臺140萬像素的彩色CCD相機(jī),其真正能夠檢測到綠色熒光信號的像素僅有約70萬個(gè)像素,其余的70萬像素的綠光強(qiáng)度信息均為計(jì)算獲得(注:因?yàn)榫G色為人眼最為敏感的顏色,所以一般彩色相機(jī)中以4個(gè)像素為一組,兩個(gè)像素采用綠色涂層,其余兩個(gè)像素則分別采用藍(lán)色及紅色涂層)。更重要的,如果采用這類彩色相機(jī)用于雙色熒光同步成像,一些顏色并不是紅綠藍(lán)三種顏色(對應(yīng)彩色相機(jī)像素上的三種濾光涂層)的熒光探針將受到極大的限制。
    
所以傳統(tǒng)上,許多實(shí)驗(yàn)室通過切換顯微鏡上的濾光塊轉(zhuǎn)盤或者是采用濾光輪進(jìn)行不同顏色之間的切換。但這樣無法做到完全同步拍攝兩個(gè)顏色的圖片,濾光塊轉(zhuǎn)盤的切換時(shí)間需要約1秒鐘,而濾光輪不同濾光片之間的每一次切換也需要幾十毫秒時(shí)間,事實(shí)上影響了實(shí)驗(yàn)的時(shí)間分辨率,所以在比較高速的比例成像等場合,采用濾光輪或者濾光塊轉(zhuǎn)盤都容易造成數(shù)據(jù)的誤差(舉例計(jì)算請參考下面所示的“應(yīng)用實(shí)例1”)。

而采用濱松W-View GEMINI則完全沒有這樣的擔(dān)心,兩個(gè)顏色的信號被成像到相機(jī)的上下兩半感光芯片上,實(shí)現(xiàn)了兩個(gè)顏色成像的完全同步。

 
雙色同步成像——一臺Flash 4.0 LT相機(jī)作兩臺用
 
采用W-View GEMINI這樣的雙色分光附件將兩種顏色的信號成像到一臺相機(jī)的一個(gè)感光芯片上很好地解決了同步成像的時(shí)間問題,但對于絕大多數(shù)的相機(jī),整個(gè)感光芯片只能設(shè)置一個(gè)曝光時(shí)間,當(dāng)兩個(gè)顏色的信號強(qiáng)度相差較大時(shí)將很難同時(shí)將兩個(gè)顏色的成像信噪比保證在最佳狀態(tài)。
 
而濱松Flash 4.0 LT則可以分別調(diào)整同一芯片上下兩半的曝光時(shí)間。所以在采用W-View GEMINI配合Flash 4.0 LT的時(shí)候,我們可以非常靈活地調(diào)整兩個(gè)顏色信號的相對亮度,得到更加能夠突出所需信號和結(jié)構(gòu)的圖片。在兩個(gè)顏色通道的信號差別非常大的時(shí)候,Flash 4.0 LT + W-View GEMINI這種靈活的曝光時(shí)間設(shè)置就可以針對不同的波長設(shè)置不同的曝光時(shí)間,同時(shí)保證兩個(gè)波長信號的信噪比。


 

              
 
W-View GEMINI應(yīng)用實(shí)例1——表達(dá)Cameleon (YC3.60)HeLa細(xì)胞在收到組胺刺激時(shí)的高速鈣離子成像
 
物鏡:100x,NA 1.49
幀速:33.3 /
相機(jī):濱松ImageEM X2 EMCCD
曝光時(shí)間:30 ms
附件:濱松W-View GEMINI
增益:1200x
 
在細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度高速變化的場合下,雙色同步成像可以保證數(shù)據(jù)的高速采集。以這個(gè)實(shí)驗(yàn)為例,YC3.60的分子中包含CFP、YFP兩個(gè)部分,沒有鈣離子結(jié)合時(shí),兩個(gè)部分距離較遠(yuǎn),用430nm的光激發(fā)時(shí)得到的是CFP所發(fā)射的480nm的青色信號;當(dāng)結(jié)合了鈣離子之后,YC3.60CFPYFP兩個(gè)部分在分子中會挨到一塊兒,符合CFP-YPF發(fā)生FRET的條件,430nm激發(fā)光照射時(shí),能量將由CFP轉(zhuǎn)移至YFP,發(fā)射出535nm的黃色熒光信號。所以通過實(shí)時(shí)檢測480nm535nm的信號強(qiáng)度比值就可以監(jiān)測細(xì)胞內(nèi)鈣離子的濃度。
如果采用濾光輪,假設(shè)不同濾光片位置的切換時(shí)間為30ms(這已經(jīng)是比較出色的產(chǎn)品了),CFPYFP各自需要30ms曝光時(shí)間,一個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)需要切換兩次濾光片位置(如從CFP切換到YFP然后還得切換回來預(yù)備下一個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)的采像),所以總共需要120ms來采集一個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn),結(jié)果就是當(dāng)我們采用濾光輪的配置時(shí)每秒鐘我們只能得到8-9個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)(鈣離子濃度數(shù)據(jù))。
 
而采用W-View GEMINI時(shí),30ms的曝光時(shí)間內(nèi)就可以同時(shí)采集到CFPYFP的熒光信號,而且沒有顏色切換的時(shí)間損失,最終保證了33/秒的高速成像,也就是說,每秒鐘我們可以得到33個(gè)鈣離子濃度數(shù)據(jù)點(diǎn)。
 
兩種方法在動力學(xué)上的表現(xiàn)高下立判。
 
                   

W-View GEMINI應(yīng)用實(shí)例2——采用Di-4-ANEPPShiPS-心肌細(xì)胞的膜電位變化進(jìn)行成像
 
物鏡:100x,NA 1.49
幀速:100 /
相機(jī):濱松Flash 4.0 V2 sCMOS
曝光時(shí)間:10 ms
附件:濱松W-View GEMINI
發(fā)射波長:525/50 nm & 630/92 nm
 
對于樣品有位置移動的情況下,雙色同步成像可以抵消樣品位置變化所造成的誤差。

比如這個(gè)例子中的誘導(dǎo)心肌細(xì)胞,我們需要通過Di-4-ANEPPS這個(gè)染料對其膜動作電位進(jìn)行成像。Di-4-ANEPPS這種熒光染料通過藍(lán)光(~488nm)激發(fā),其發(fā)射波長卻會根據(jù)膜電位而有所變化,通過計(jì)算細(xì)胞不同區(qū)域內(nèi)525nm/630nm的比值就可以得到此區(qū)域內(nèi)膜電位的變化。這種成像方法相相對膜片鉗等電生理方法而言,可以得到細(xì)胞任意位置的膜電位變化,空間分辨率更高。而W-View GEMINI雙色分光附件以及高速高靈敏度的Flash 4.0 sCMOS相機(jī)的應(yīng)用也保證了其極高的時(shí)間分辨率(每秒100個(gè)數(shù)據(jù)點(diǎn)),使得我們可以對細(xì)胞任意位置的動作電位進(jìn)行時(shí)間空間都非常精確的測量。

                 
                     

W-View GEMINI應(yīng)用實(shí)例3——線蟲鹽敏感(salt-sensing)神經(jīng)元在NaCl濃度變化時(shí)響應(yīng)的時(shí)空關(guān)系分析
 
物鏡:60xoil
幀速:30 /
相機(jī):濱松Flash 4.0 LT
曝光時(shí)間:33 ms
附件:濱松W-View GEMINI
探針:ASER-R-GECO1_AIY-G-GECO1.2
 
在這個(gè)例子中,為了監(jiān)測ASERAIY兩個(gè)神經(jīng)元在外界NaCl濃度變化時(shí)的表現(xiàn),研究者分別在兩個(gè)神經(jīng)元上表達(dá)標(biāo)記了紅色和綠色的鈣離子敏感熒光蛋白R-GECO1G-GECO1.2,然后讓環(huán)境中的NaCl濃度以10秒為周期在0mM50mM之間切換。通過分析兩個(gè)神經(jīng)元內(nèi)鈣離子的濃度變化,可以看出兩個(gè)神經(jīng)細(xì)胞兩者在NaCl不同濃度下的相反表現(xiàn)。

擴(kuò)展閱讀GCaMP鈣離子成像中,視網(wǎng)膜上兩個(gè)神經(jīng)細(xì)胞表現(xiàn)出相反的鈣離子濃度變化(A濃度高的時(shí)候B濃度低,B濃度變高時(shí)A濃度下降),如何采用Reslice方法在平面圖中反映出這種關(guān)系,敬請參閱鏈接中文章第14-16步:點(diǎn)擊進(jìn)入了解>> 
 
 
                   

W-View GEMINI應(yīng)用實(shí)例4——心肌細(xì)胞搏動時(shí)鈣離子濃度的變化與細(xì)胞收縮在時(shí)間上的先后分析
 
相機(jī):濱松Flash 4.0 V2
物鏡:40xNA 0.6
附件:濱松W-View GEMINI
曝光時(shí)間:30 ms
 
除了兩個(gè)不同顏色的熒光同步成像之外,W-View GEMINI還可以用于熒光和明場的同步成像。在這個(gè)例子中,研究者同步拍攝監(jiān)測了心肌細(xì)胞波動時(shí)的鈣離子濃度變化以及細(xì)胞收縮的情況。藍(lán)光激發(fā)發(fā)綠色熒光的Fluo-8被用于鈣離子濃度的監(jiān)測,而明場的相差(phase contrast)成像則是采用了600-680nm的紅光。通過對單個(gè)細(xì)胞中鈣離子濃度和相差圖像的分析,可以看出鈣離子的濃度上升是稍稍領(lǐng)先于心肌細(xì)胞的收縮的。
 
這一類實(shí)驗(yàn)中,明場透射光的信號是比熒光信號強(qiáng)很多的,除了可以在明場透射光光路中加入減光片將兩個(gè)信號調(diào)整得差不多之外,更方便的方法是利用Flash 4.0 LT可以針對芯片兩半分別調(diào)整曝光時(shí)間的特點(diǎn)進(jìn)行更加靈活的調(diào)整(參考本文相關(guān)段落:雙色同步成像——一臺Flash 4.0 LT相機(jī)作兩臺用)。

 
                        

W-View GEMINI應(yīng)用實(shí)例5——斑馬魚雙色雙光子lightsheet成像
 
相機(jī):濱松Flash 4.0 V2
附件:濱松W-View GEMINI
 
在國內(nèi),北京大學(xué)的研究者也采用W-View GEMINI在他們自己設(shè)計(jì)搭建的雙色雙光子lightsheet成像系統(tǒng)中。系統(tǒng)采用兩臺飛秒激光器作為光源分別雙光子激發(fā)兩個(gè)顏色的熒光探針,進(jìn)行雙色的3lightsheet成像。樣品是3天大小的斑馬魚,紅色和綠色的熒光探針分別標(biāo)記著紅細(xì)胞和胰島細(xì)胞,為了能夠盡可能縮短3維圖像的采集時(shí)間,以防紅細(xì)胞在血管中的移動影響成像質(zhì)量,系統(tǒng)中采用了W-View GEMINI進(jìn)行了雙色的分光,讓Flash 4.0 V2相機(jī)同步對紅細(xì)胞和胰島細(xì)胞進(jìn)行成像。
http://v.youku.com/v_show/id_XMTI3NjQzMjA1Mg==.html
 
擴(kuò)展閱讀:更多的資料可以參考其在濱松顯微成像大賽上的投稿。其獨(dú)特的高速三維lightsheet成像方法2P3A-DSLM的介紹可參考其已發(fā)表的論文。
 
更多雙色同步成像的文獻(xiàn)與應(yīng)用實(shí)例
1. 單分子多色FRET,采用濱松Flash 4.0 & W-View GEMINI,通過cy3/cy5/cy7的組合分析核糖體與tRNA的相互作用:
Juette MF, et. al, The bright future of single-molecule fluorescence imaging, Curr Opin Chem Biol. 2014 Jun 20;20C:103-111.
 
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